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启动子的分析和预测

 

启动子的分析和预测

一、摘要

  1. 加深对基因启动子的理解和认知;
  2. 学会如何获取已知基因的启动子序列数据;
  3. 熟悉不同启动子分析软件的使用及其适用范围;
  4. 学会设计启动子克隆引物。
  5. 熟悉EPD和TransFac数据库的使用;
  6. 学会使用已知的启动子和转录因子TransFac的HMM模型,并能够独立编程,利用该HMM模型来计算鉴别未知启动子

二、材料和方法

1、硬件平台

处理器:Intel(R) Core(TM)i7-4710MQ CPU @ 2.50GHz
安装内存(RAM):16.0GB

2、系统平台

Windows 8.1、Ubuntu

3、软件平台

【1】Primer-BLAST
【2】Softberry系列工具
【3】Promoter 2.0
【4】BDGP
【5】Cister
【6】NEBcutter

4、数据库资源

NCBI数据库:https://www.ncbi.nlm.nih.gov/
UCSC数据库:http://genome.ucsc.edu/

5、研究对象

人类谷胱甘肽硫转移酶M1的promoter区域

三、结果

基因启动子序列的获取

选择基因:谷胱甘肽硫转移酶M1(GSTM1)
概况:当携带风险基因型时,对环境毒素和致癌物质的敏感性提高,易发生DNA突变和染色体畸变,患白血病的风险因而显著增加。
首先进入UCSC genome browser 查看GSTM1上游5kb范围内有无其他基因。发现该基因的上游存在同一家族的GSTM2,所以promoter大概只有3kb。
UCSC genome browser
图表 1UCSC genome browser
接下来进入Genbank,搜索GSTM1,查看该基因在基因组中的定位和基因结构。
查看基因定位和结构
图表 2查看基因定位和结构
打开该基因的序列信息,获取该基因的启动子序列(包含exon1)
查看基因定位和结构
查看基因定位和结构

Neural Network Promoter Prediction

进入BDGP: Neural Network Promoter Prediction网站http://www.fruitfly.org/seq_tools/promoter.html,进行启动子预测
BDGP启动子预测
图表 3 BDGP: Neural Network Promoter Prediction网站
一共预测出来3个启动子(这个网站预测出来的promoter都是50bp)
BDGP预测结果

Promoter 2.0 Prediction

使用Promoter 2.0 Prediction Server http://www.cbs.dtu.dk/services/Promoter/
进行启动子预测,也是一共预测出来3个启动子
Promoter 2.0预测结果
图表 5Promoter 2.0预测结果

Softberry预测

TSSW、TSSP、TSSG、FPROM都是softberry提供的启动子预测工具,进入
官网(http://www.softberry.com/),然后点击service即可,启动子预测工具网址:
http://www.softberry.com/berry.phtml?topic=index&group=programs&subgroup=promoter

TSSW

TSSW具体网址如下(http://www.softberry.com/berry.phtml?topic=tssw&group=programs&subgroup=promoter),输入序列进行预测即可。TSSW并没有预测出来promoter区域。
TSSW预测结果
图表 6TSSW预测结果

TSSP

TSSP具体网址如下(http://www.softberry.com/berry.phtml?topic=tssp&group=programs&subgroup=promoter),输入序列进行预测即可。共计预测出来一个promoter区域。
TSSP预测结果
图表 7 TSSP预测结果

TSSG

TSSG具体网址如下(http://www.softberry.com/berry.phtml?topic=tssg&group=programs&subgroup=promoter),输入序列进行预测即可。TSSG并没有预测出来promoter区域。
TSSG预测结果
图表 8TSSG预测结果

FPROM

FPROM具体网址如下(http://www.softberry.com/berry.phtml?topic=fprom&group=programs&subgroup=promoter),输入序列进行预测即可。FPROM并没有预测出来promoter区域。
FPROM预测结果
图表 9FPROM预测结果

Cister

Transcription Elements预测平台:Cis-element Cluster Finder
https://zlab.bu.edu/~mfrith/cister.shtml
由于序列只有3kb,默认参数预测出来的转录元件太少,将average distance between clusters参数由默认的3w修改为3k,最有可能的结果还是NF-1
Cister预测结果
图表 10Cister预测结果

Match

转录因子预测集合网站http://gene-regulation.com/pub/programs.html (需要注册)
具体网址http://gene-regulation.com/cgi-bin/pub/programs/match/bin/match.cgi
Match预测结果
图表 11Match预测结果

AliBaba 2.1

转录因子预测集合网站http://gene-regulation.com/pub/programs.html (需要注册)
具体网址http://gene-regulation.com/pub/programs/alibaba2/index.html
预测出来一大堆,下面仅截取其中一部分。
AliBaba预测结果
图表 12AliBaba预测结果

基因结构绘图

虽然使用了6个promoter预测在线平台,但是只有3个平台预测出promoter。
利用在线平台processon绘制基因结构图
基因结构图
图表 13基因结构图
接下来大致将预测结果分为4个区域,将引物设计的范围同时绘制出来(箭头为引物)

PrimerBlast引物设计

引物结构
图表 14引物结构
先使用默认参数进行尝试,设置好Forward primer和Reverse primer的Range,再将PCR product size最大值调成整段序列的长度3005,同时# of primers to return参数调整为1,以方便截图。
引物位置引物位置引物位置引物位置
图表 15引物位置
初步设置参数
图表 16初步设置参数
然而由于有重复序列,经过repeat filtering,不会跑出来引物,只能将参数调宽松。
默认参数结果
图表 17默认参数结果
在Advanced parameters的Primer Parameters栏目,将Repeat filter关掉,同样可以看出来GC含量和TM值也筛选掉很多引物,在Internal hybridization oligo parameters栏目,将引物内杂交的参数调整宽松。
高级参数调整
图表 18高级参数调整

引物设计结果:

第一段
图表 19第一段
第二段
图表 20第二段
第三段
图表 21第三段
第四段
图表 22第四段
第一段:

· Sequence (5’->3’) Template strand Length Start Stop Tm GC% Self complementarity Self 3’ complementarity
Forward primer TCGTACCTACCCTCTGTTCGT Plus 21 164 184 60 52.38 4 0
Reverse primer GGGCTGCACTCAGTAAGACT Minus 20 2918 2899 59.39 55 5 3

第二段:

· Sequence (5’->3’) Template strand Length Start Stop Tm GC% Self complementarity Self 3’ complementarity
Forward primer CCAAGTGCCCCAACTTAGCA Plus 20 849 868 60.54 55 4 0
Reverse primer GGGCTGCACTCAGTAAGACT Minus 20 2918 2899 59.39 55 5 3

第三段:

· Sequence (5’->3’) Template strand Length Start Stop Tm GC% Self complementarity Self 3’ complementarity
Forward primer CCAGGCGTCACTAACACAGG Plus 20 1522 1541 60.67 60 3 1
Reverse primer GTTCCGGGAGCGAAGTCAG Minus 19 2874 2856 60.45 63.16 5 1

第四段:

· Sequence (5’->3’) Template strand Length Start Stop Tm GC% Self complementarity Self 3’ complementarity
Forward primer CGAGGGCCCCTAACAGAAAA Plus 20 2405 2424 59.67 55 7 0
Reverse primer CTGGGGCTGCACTCAGTAAG Minus 20 2921 2902 60.39 60 5 3

NEBcutter酶切位点分析

使用NEBcutter分析该启动子序列,为了更加全面,查找全部的特异性位点Enzymes to use: All specificities
http://nc2.neb.com/NEBcutter2/
保存没有酶切位点“0 cutters”的核酸内切酶数据,见附录。
NEBcutter结果
图表 23NEBcutter结果

pGL4.17载体

查询pGL4.17的载体数据,获得酶切信息。查询关键词:promega pGL4.17。
pGL4.17载体信息
图表 24pGL4.17载体信息
其中SfiI、Acc65I、KpnI、SacI、NheI、XhoI、EcoRV、BglII、HindIII这九个酶都属于在promoter内部没有酶切位点的,这些都可以选用。

引物设计

从上面九个酶中随便选两个(真实情况要考虑到切割率等问题)
选择KpnI和SacI,下面是酶切位点和保护碱基对应表,KpnI选两个保护碱基。
引物设计
可以看出来酶切位点序列在反向互补以后和原序列相同,直接把这段序列加在引物前面就成。
最后按照“保护碱基+酶切序列+PCR引物”的顺序,设计用于可以转到pGL4.17载体的引物。

· 164…184–2918…2899 849…868–2918…2899 1522…1541–2874…2856 2405…2424–2921…2902
Forward Primer CGAGCTCTCGTACCTACCCTCTGTTCGT CGAGCTCCCAAGTGCCCCAACTTAGCA CGAGCTCCCAGGCGTCACTAACACAGG CGAGCTCCGAGGGCCCCTAACAGAAAA
Reverse Primer GGGGTACCGGGCTGCACTCAGTAAGACT GGGGTACCGGGCTGCACTCAGTAAGACT GGGGTACCGTTCCGGGAGCGAAGTCAG GGGGTACCCTGGGGCTGCACTCAGTAAG

后续实验流程

接下来,用这四组引物,把四个promoter区域PCR出来,顺带PCR出来的还有保护碱基和酶切序列,导入pGL4.17,用双荧光素酶报告系统看看哪儿个promoter活性最高,大概会出来下面这种图,后面那张图明显说明promoter3活性最高。
后续实验流程后续实验流程
再接下来,还可以用TFSEARCH,TFBSs,TRED这样的转录因子预测软件(上面也做了几个预测),看看活性最高的那段区域和哪儿些转录因子相关,或者用pubmed查查看文献,ENCODE,TRANSFAC等数据库,查找这个基因启动子区域的转录因子信息。

接下来是编程练习部分

HMM模型

TransFac是转录因子数据库,但是好像需要注册才能下载模型的矩阵。
从EPD真核生物启动子数据库下载脊椎动物TATA-box的矩阵(共计12位碱基)。
网址http://epd.vital-it.ch/promoter_elements.php
利用该矩阵建立打分模型,对上面谷胱甘肽硫转移酶M1(GSTM1)的启动子序列进行分析,具体代码见附录。
打分值:每次取出12bp序列计算,依次计算每位碱基所占比例,再累乘得到分值(由于数值太小,分值皆除以最大分值)
打分值统计图
图表 25打分值统计图
P值计算:使用bootstrap方法,将12bp序列打乱1000次,再按照上述方法计算分值,如果1000次内有n次分值高于“打乱之前的分值”,则p值为n/1000
p值统计图
图表 26 p值统计图
看的出来,整段promoter区域大部分分值都为0,p值为1。之前在线预测软件中的200,400,1200,2570这四个位置,此处也能预测出来,效果还可以。

附录

”0 cutters”核酸内切酶

Col1 Col2 Col3
1 AatII GACGTC
2 AbaCIII CTATCAV
3 AbsI CCTCGAGG
4 Acc65I GGTACC
5 Acc65V GACGCA
6 AclI AACGTT
7 AfeI AGCGCT
8 AflII CTTAAG
9 AflIII ACRYGT
10 AhyRBAHI GCYYGAC
11 AjuI (N)5(N)7GAA(N)7TTGG(N)6(N)5
12 AleI CACNNNNGTG
13 AloI (N)5(N)7GAAC(N)6TCC(N)7(N)5
14 AlwFI GAAAY(N)5RTG
15 ApyPI ATCGAC(N)18NN
16 AscI GGCGCGCC
17 AseI ATTAAT
18 AsiSI GCGATCGC
19 AspDUT2V GNGCAAC
20 Asu14238IV CGTRAC
21 BaeI (N)5(N)10ACNNNNGTAYC(N)7(N)5
22 BamHI GGATCC
23 BarI (N)5(N)7GAAG(N)6TAC(N)7(N)5
24 Bce3081I TAGGAG
25 BceAI ACGGC(N)12NN
26 BcgI NN(N)10CGA(N)6TGC(N)10NN
27 BclI TGATCA
28 BdaI NN(N)10TGA(N)6TCA(N)10NN
29 BglII AGATCT
30 BlpI GCTNAGC
31 BmgBI CACGTC
32 BmtI GCTAGC
33 BpuJI CCCGT
34 BsaAI YACGTR
35 BsbI CAACAC(N)19NN
36 BsiEI CGRYCG
37 BsiWI CGTACG
38 Bsp24I (N)5(N)8GAC(N)6TGG(N)7(N)5
39 Bsp3004IV CCGCAT
40 Bsp460III CGCGCAG
41 BspDI ATCGAT
42 BsrBI CCGCTC
43 BsrGI TGTACA
44 BssHII GCGCGC
45 BstAPI GCANNNNNTGC
46 BstBI TTCGAA
47 BstEII GGTNACC
48 BstZ17I GTATAC
49 Bsu3610I GACGAG
50 BtgZI GCGATG(N)10NNNN
51 Cal14237I GGTTAG
52 CcrNAIII CGACCAG
53 Cdi11397I GCGCAG
54 Cdi81III GCMGAAG
55 CdiI CATCG
56 Cgl13032I GGCGCA
57 Cgl13032II ACGABGG
58 ClaI ATCGAT
59 Cma23826I CGGAAG
60 CstMI AAGGAG(N)18NN
61 DrdI GACNNNNNNGTC
62 EagI CGGCCG
63 EciI GGCGGA(N)9NN
64 Eco53kI GAGCTC
65 EcoRV GATATC
66 Exi27195I GCCGAC
67 FseI GGCCGGCC
68 FspAI RTGCGCAY
69 FspI TGCGCA
70 GauT27I CGCGCAGG
71 GdiII CGGCCR
72 HindIII AAGCTT
73 HpaI GTTAAC
74 Hpy99I CGWCG
75 HpyAXIV GCGTA
76 Jma19592I GTATNAC
77 Jma19592II GRGCRAC
78 Kor51II RTCGAG
79 KpnI GGTACC
80 Lmo370I AGCGCCG
81 Lsp6406VI CRAGCAC
82 Maf25II CACGCAG
83 MaqI CRTTGAC(N)19NN
84 MauBI CGCGCGCG
85 MkaDII GAGAYGT
86 MluI ACGCGT
87 MreI CGCCGGCG
88 MslI CAYNNNNRTG
89 MteI GCGCNGCGC
90 NaeI GCCGGC
91 Nbr128II ACCGAC
92 NgoMIV GCCGGC
93 NhaXI CAAGRAG
94 NheI GCTAGC
95 NotI GCGGCCGC
96 NpeUS61II GATCGAC
97 NruI TCGCGA
98 PacI TTAATTAA
99 PaeR7I CTCGAG
100 Pal408I CCRTGAG
101 PciI ACATGT
102 PcsI WCGNNNNNNNCGW
103 Pfl1108I TCGTAG
104 PflFI GACNNNGTC
105 PflMI CCANNNNNTGG
106 PlaDI CATCAG(N)19NN
107 PliMI CGCCGAC
108 PmeI GTTTAAAC
109 PmlI CACGTG
110 PpiI (N)5(N)7GAAC(N)5CTC(N)8(N)5
111 PshAI GACNNNNGTC
112 PsiI TTATAA
113 PspXI VCTCGAGB
114 PsrI (N)5(N)7GAAC(N)6TAC(N)7(N)5
115 Pst273I GATCGAG
116 PvuI CGATCG
117 RceI CATCGAC(N)18NN
118 RdeGBI CCGCAG
119 RpaB5I CGRGGAC(N)18NN
120 RpaBI CCCGCAG(N)18NN
121 RpaI GTYGGAG(N)9NN
122 RpaTI GRTGGAG
123 Rsp008IV ACGCAG
124 RspPBTS2III CTTCGAG
125 RsrII CGGWCCG
126 SacI GAGCTC
127 Saf8902III CAATNAG
128 SalI GTCGAC
129 SbfI CCTGCAGG
130 SexAI ACCWGGT
131 SfiI GGCCNNNNNGGCC
132 SgrAI CRCCGGYG
133 SgrDI CGTCGACG
134 SnaBI TACGTA
135 SpeI ACTAGT
136 SphI GCATGC
137 SpnRII TCGAG
138 SrfI GCCCGGGC
139 SsmI CTGATG
140 Ssp714II CGCAGCG
141 SstE37I CGAAGAC(N)18NN
142 Sth20745III GGACGAC
143 SwaI ATTTAAAT
144 TaqIII CACCCA(N)9NN
145 TspARh3I GRACGAC
146 TssI GAGNNNCTC
147 Tth111I GACNNNGTC
148 UbaF12I CTACNNNGTC
149 UbaF13I GAG(N)6CTGG
150 UbaF14I CCA(N)5TCG
151 UbaF9I TAC(N)5RTGT
152 UbaPI CGAACG
153 Xca85IV TACGAG
154 XhoI CTCGAG
155 ZraI GACGTC

模型矩阵

从EPD下载,保存为data.txt
http://epd.vital-it.ch/promoter_elements.php

Position 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
A 17.7 19.3 6.6 83.4 0 95 72.3 94.2 53.3 29.3 17.7 22.7
C 21.1 36.1 14.8 0 0 0 0 0 0 9 32.5 33
G 29 36.4 6.8 0 0 0 0 5.8 20.1 51.2 37.7 33.2
T 32.2 8.2 71.8 16.6 100 5 27.7 0 26.6 10.5 12.1 11.1

R代码

setwd("G:/AllShare/genomicsHomework/HMMmodel")
hmmmodel<- read.table("data.txt",header = TRUE)
rownames(hmmmodel) <- hmmmodel$Position
hmmmodel <- hmmmodel[,-1]
hmmmodel <- hmmmodel/100
hmmmodel <- t(hmmmodel)
library(seqinr)
promoter<- read.fasta(file = "promoter.fa")
seqmatrix<- as.matrix(promoter$`NC_000001.11:109684796-109687800`)
# 转成大写字母
seqmatrix<- toupper(seqmatrix)
maxseq<- strsplit("TGTATAAAAGGG",split = "")[[1]]
# 计算打分值
computeScore <- function(seq){
  score <- 1
  for(i in 1:length(seq)){
    score <- score*hmmmodel[i,seq[i]]
  }
  return(score)
}
# 使用bootstrap方法,计算p值
bootstrap<- function(seq){
  flag <- 0
  for(i in 1:1000){
    tmp <- sample(seq)
    score<- computeScore(tmp)
    if(score>=computeScore(seq)){
      flag <- flag+1
    }
  }
  return(flag/1000)
}
maxscore<- computeScore(maxseq)
bootstrap(maxseq)
scorevector <- c()
pvaluevector <- c()
for(i in 1:(length(seqmatrix)-11)){
  tmp<- seqmatrix[i:(i+11)]
  score <- computeScore(tmp)
  pvalue <- bootstrap(tmp)
  scorevector <- c(scorevector,score)
  pvaluevector <- c(pvaluevector,pvalue)
}
result <- data.frame(scorevector,pvaluevector)
result$position <- 1:(length(promoter$`NC_000001.11:109684796-109687800`)-11)
colnames(result) <- c("score","pvalue","position")
result$score <- result$score/maxscore
library(ggplot2)
ggplot(result, aes(x=position, y=score)) + 
  geom_line() + 
  geom_point(size=4, shape=20) +
  labs(title="score by HMM model")+
  theme(plot.title = element_text(hjust = 0.5))
ggsave("HMM模型打分图.pdf")

ggplot(result, aes(x=position, y=pvalue)) + 
  geom_line() + 
  geom_point(size=4, shape=20) +
  geom_hline(aes(yintercept = 0.05),colour="red",linetype="dashed")+
  labs(title="p value by HMM model")+
  scale_x_continuous(breaks = c(0,200,400,1030,1200,1632,2570,2700))+
  theme(plot.title = element_text(hjust = 0.5))
ggsave("HMM模型p值图.pdf")

序列

Promoter序列
>NC_000001.11:109684796-109687800 Homo sapiens chromosome 1, GRCh38.p7 Primary Assembly
TCTGCTCTTGAACCCTGTGTTCTGTTGTTTAAGATGTTTATCAAGACAATATGTGCACCACTGAACATAG
ACCCTTATCAGGAGTTCTACTTTTGCCTTTGTCCTGTTTCCTCAGAAGCATGTGATCTTTGTTCTGCTTT
TTGCCCTTTAAAGCATGTGATCTTCGTACCTACCCTCTGTTCGTACACCACCACCCCTTTTGCAATCCTT
AATAAAAACTTGCTGGTTTTGAGGCTCGGGCAGGCATCATGGTCCTACCGATATGTGATGTCACCCCTGG
CGGCCCAGCTGTAAAATTCTTCTCTTTGTACTCTTTCTCTTTATTTCTCAGCTGGCTGACACTTATGGAA
AATAGAAAGAACCTACGTTGAAATATTGGGGGCAGGTTCCCCAATAGCCTTGCTGAGGAAATTAAATTTA
TGTTCAAGTGCTATTTCTTTATGGCACCAAGGAACAAGTATTTCAAACAATACTAATGTAACAGTACTGG
TTCTATGTGTTTCAAAATTATTATTCTCATGAGTGTTAGCTTTCTTAAAAAATCGTTTTTTTTTTCAATT
GGATCTAGACATCTTATCTTTCACAGCTCAAGACGGATTAACTCAGAATCATAAACTCTTAATGCATAAT
GAGAAATATAATGTTTCCTAGGGCCAGGCACTTGTGTCTGTGCTGGTGCTATTGCCTCAATGCAGGAAAA
TCTATGTAAGAGTTCACTGTGAGGCCAAAACTGCTTCCTAAACATGGATACCTGCCAGGTATCTGAGCTG
GGAGTACTGCCCAGGTCTGGATGGGCGGGGAGTGTTTGCAACAAGGACTGTGCCTTGCCAGCCTCAGTGA
CACAGTGTCCAAGTGCCCCAACTTAGCAGCCACCTGCTGACCACCTGATTTCTGTGGCCTAATAGGGATG
TGATGAAGTCTACCTGTTTACTCAACCCCAAACCACACATTATCCAGGTGGTTTGAAACTTTTTTGATAT
ACTGGGTTCATCCTCTGGAGTCCTAACAATGTTTTAGCTAATTTACAAAAAACAAAACAAAACAAAACAA
AACAAAACAAAACAAAAAAACTACTTTTTTTGCAGCACAACAGCCTGGTTTACATTGCAAAATGATTTCT
CATTAAAGGTCTATCATCTATTTCCATATGTCCATTATTATTTGCAATATCCTTTAAAGCAGTCAACCCC
AGGCTAATCCATTGCACAACTCTTTTGAAAGTCTTCCTTCTACCTTGAAAGAAGAAAGTTGGCAGGTTGG
ACATTGTTCTCGTGGAGGTTGTACCATGGGTCACATATCACGGTGTGACTTCAAAGGCCACTGGAGCCAC
CGTCTCATACTGAAGAACACACATGGGTCAGGAGCCAGGTCCAGGTCCGGAATGGTGGATCTGGAGAGGG
GAGGGTCCCTGCCTGTGGTCCTGTGGGGAGCCCTCAGGCTCCTCTCTGGCCACCATCCTCTGACCTCCCT
CCTCAGCAGGACAGGGTTCTGGCTTCTCTGAGGGACAGGTTCTGTGGCAGGCCAGGCGTCACTAACACAG
GCCTCCATAACAACTGTTTCAGTACTGACTGAGTGGTGAAGTTAAATATTAAAAGCTGAAAAAAGCCAGT
ACCTTTATACAGAGGCTGGATGTAACAAAAGCCCACCAAGAGTTTTGCTTAGGCCTTTCCTGGGCCTTAA
AGCATGACAAAACAATGAAGGAATTCTTAACAGGACCTATTTAGAATTAAACAAGTTTTATTGTGAGTCT
GAAGAAACTCCCCAGGCCTCCACAAACAAGTTTATTGGGCGTCTGAAGGAACTCCCCAAACCTCCGTGAT
TTAGCAGGAGACAAGATAAGGGTAATCATCCCCCGCACCTGGACCCATTTAGATTAAATAAATAGACTGA
GGCTCCAGAATAAGGTCCTCAGGACCCAGACCTCAGTTACAGATTAAAGAAGTTAATCACTTATGTCTTT
AGATGAATGCACACTTACTTGTAGACATATACCTTAGAAGGTATATATGCTCTGGAAAACTTTGTAATAT
TGAGTTGGTCTGGTGGTAATTTCTAGGCCTTCTCCCTGTTACCGGTTGCAGAAATAAAACCTCTCTTCCT
CCCCATTTGATCTGCATCTCGTTATTGGGCCTAGAGAAATAGCAGCCGGACCCTCAGTTTGGTCCGGGAA
GTTCTTCCATCCTCCCTCGCCTGCTCTCTGTGGCCACTGCACTCACTGTTGCTGTTGCTGTTCCGGTCTC
TGTGAGGTTCACCTAGTGGACTGGCTGGACATTTCTAGGGGGCACCTCAGATACCTCACCAACTTGCTGG
ATCTGATCCTTGGATTTCGATTCATAAATTGTGCCAAAATACGAAGTGGCTAATTTACACAGTACTTAGC
CAGATGACCGAAGGACTCAGTACCCGAGGGCCCCTAACAGAAAACACAGACCACATTTCCTTTACTCTGG
CCCTTTTCCTGGGGGTCCTTCCTATACCACTGACACTGTTCCTGTGTAGGCGGGGCTAGAGGGGAGACTA
AGCCCTGGGAGTAGCTTTCGGATCAGAGGAAGTCCTGCTCTTACAGTGACAGGGGCTGAATTAAATTCCC
AGGTTGGGGCCACCACTTTTTAGTCTGACCCCTGCAGCCGGAGTCTCCCAGAGCCCTTGGGAACTCGGCA
GCGGAGAGAAGGCTGAGGGACACCGCGGGCAGGGAGGAGAAGGGAGAAGAGCTTTGCTCCGTTAGGATCT
GGCTGGTGTCTCAAGCGCACAGCCAAGTCGCTGTGGACCTAGCAAGGGCTGGATGGACTCGTGGAGCCTC
AGGGCTGGGTAGGGAAGCTGGCGAGGCCGAGCCCCGCCTTGGGCTTCTGGGCGCCCTGACTTCGCTCCCG
GAACCCTCGGGCCTGGGAGGCGGGAGGAAGTCTTACTGAGTGCAGCCCCAGGCGCCCTCTCCCGGGCCTC
CAGAATGGCGCCTTTCGGGTTGTGGCGGGCCGAGGGGCGGGGTCGCAGCAAGGCCCCGCCTGTCC

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